这方面我有惨痛教训,当时我买的抗体稀释液偏酸,结果背景一片黄(未见特异性染色),建议pH在。(中性及弱碱性条件(pH7-8)有利于免疫复合物的形成,而酸性条件则有利于分解;低离子强度有利于免疫复合物的形成,而高离子强度则有利于分解)9)拍照有条件的话比较好立即拍照,若不能及时拍照,也要封好片和用指甲油封固,保持避光和湿度。使用荧光显微镜注意严格按照荧光显微镜出厂说明书要求进行操作,不要随意改变程序;应在暗室中进行检查;防止紫外线对眼睛的损害,在调整光源时应戴上防护眼镜;检查时间每次以1~2h为宜,超过90min,超高压汞灯发光强度逐渐下降,荧光减弱;标本受紫外线照射3~5min后,荧光也明显减弱或褪色;激发光长时间的照射,会发生荧光的衰减和淬灭现象;所以**多不得超过2~3h;荧光显微镜光源寿命有限,标本应集中检查,以节省时间,保护光源。天热时,应加电扇散热降温,新换灯泡应从开始就记录使用时间。灯熄灭后欲再启用时,北京六色免疫组化检测服务,须待灯光充分冷却后才能点燃,北京六色免疫组化检测服务。***中应避免数次点燃光源,北京六色免疫组化检测服务。关闭汞灯至少在开启15-30分钟后;标本染色后立即观察,因时间久了荧光会逐渐减弱。若将标本放在聚乙烯塑料袋中4℃保存,可延缓荧光减弱时间,防止封裱剂蒸发。
⑴抗原有无丢失主要看组织切片的新鲜程度,一般切片室温保存超过3-6个月,可能切片内的抗原丢失很严重(有文献支持),此时可以通过重新用石蜡块切片来进一步验证(蜡块需要低温保存)。⑵石蜡切片在制作过程中可能因醛基对抗原决定族的封闭,这需要通过抗原修复来充分暴露,从而增加抗原抗体结合反应,提高阳性率,我一般用6min*4次中火微波抗原修复,用枸橼酸钠缓冲液。⑶组织切片中本身抗原含量的多少?这方面我有教训的,我做胎鼠睾丸间质细胞鉴定,用1:200一抗效果很好;但我用1:200一抗孵育成年睾丸间质细胞检测,几乎呈阴性,后来证实是因为两者抗原含量相差甚远,则一抗也要适当提高浓度。2、其次,检查抗体有无选择错误和抗体孵育条件是否不适。⑴一抗选择单克隆抗体易出现阴性结果,因为灵敏度低但特异性好;一抗的speciesreactivity中无检测组织的种属,这是比较常见的错误;一抗选择rat,而二抗是抗mouse/rabbit等均有可能出现阴性结果。⑵抗体孵育时间过短,容易导致阴性结果。一般一抗我建议4℃孵育过夜和37℃复温45min;二抗我一般37℃30min。我不喜欢参照二抗染色试剂盒说明书。⑶抗体浓度过低。这是阴性结果的**可能原因。必须提高稀释度。
是分泌性蛋白检测优先方法之一。下面介绍下免疫组化方法的具体实验流程步骤。实验流程简介一、SP三步法1)石蜡切片,常规脱蜡至水。2)(无色液体)孵育10-30分钟,以灭活内源性过氧化物酶活性。3)蒸馏水冲洗,PBS浸泡5分钟4)候选步骤:采用抗原修复:微波(建议30分钟内4次中火)、高压、酶修复方法。自然冷却,再用3分钟×3次.5)血清封闭:室温15-30分钟,尽可能与二抗来源一致。倾去,勿洗。6)滴加适当比例稀释的一抗,37℃孵育2~3小时或4℃过夜(比较好复温)。PBS冲洗,3分钟×5次。7)滴加生物素标记的二抗,室温或37℃孵育30分钟-1h。8)PBS冲洗,3分钟×5次。9)滴加SP(链霉亲和素-过氧化物酶),室温或37℃孵育30分钟-1h。10)PBS冲洗,3分钟×5次。11)显色剂显色(DAB等)。12)自来水充分冲洗。13)可进行复染,脱水,透明。14)选择适当的封片剂封片。二、即用型二步法1)脱蜡、水化组织切片。2)根据所应用的一抗的特殊要求,对组织切片进行预处理。3),以阻断内源性过氧化物酶,PBS或TBS冲洗。4)滴加一抗,室温或37℃孵育30~60分钟,或4℃过夜,PBS或TBS浸洗3分钟×5次。5)滴加enhangcer增强剂,37℃30min,PBS或TBS浸洗3分钟×5次。
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